在实验室中分离和鉴定放线菌，通常需要经过以下几个步骤：
1. 样品采集：根据研究目的或临床需求选择合适的样本。例如，如果怀疑是感染导致的疾病，则从病变部位取样；如果是环境中的放线菌调查，则可以从土壤、水体等自然环境中取样。
2. 培养基准备：选用适合放线菌生长的培养基，如高氏一号琼脂（Gao’s No.1 Agar）、淀粉硝酸盐琼脂（Starch Nitrate Agar）或改良的Thioglycollate Medium等。这些培养基含有足够的营养成分，有利于促进放线菌的生长。
3. 接种与培养：将采集到的样本均匀涂抹于上述准备好的固体培养基表面或者接种至液体培养基中，并置于适宜条件下（如28-30℃）进行恒温培养，一般需要几天甚至几周时间才能观察到明显的菌落形成。
4. 初步筛选：通过肉眼观察菌落形态、颜色等特征初步判断是否为放线菌。放线菌的典型菌落通常呈放射状生长或有类似霉菌样的絮状结构，有时还会散发出特异性的气味。
5. 显微镜检查：取少量疑似放线菌的菌体，用革兰氏染色法进行显微镜下观察。放线菌大多数为革兰阳性，其细胞壁含有较多肽聚糖成分。此外，还可以通过制备孢子悬液来进一步确认。
6. 生化试验与分子生物学方法：对于初步筛选出的疑似菌株，可通过一系列生化反应（如分解淀粉、利用脂肪酸等）以及16S rRNA基因序列分析等方式进行更精确的鉴定。这一步骤能够帮助确定具体的属种信息。
7. 抗生素敏感性测试：如果需要了解放线菌对抗生素的敏感情况，则可采用纸片扩散法或微量稀释法测定其最低抑菌浓度（MIC）值，这对于临床治疗具有重要意义。

通过上述步骤，可以有效地在实验室中分离和鉴定出放线菌。需要注意的是，在整个过程中应严格遵守无菌操作规程，避免污染影响实验结果。