1.电转化感受态细胞的制备

　　1.用枪头挑取单克隆菌落，投入盛有10ml LB液体培养基的50ml离心管中。（同时做培养基和枪头的空白对照）

　　2.37℃，220rpm，培养14-16个小时。

　　3.第二天，以1：100的比例将这10ml菌液倒入1000ml LB液体培养基中，37度，220rpm，振摇2-3小时，每半小时测一次OD，当OD值达到0.3-0.4时，停止培养。

　　4.将菌液在冰上预冷30分钟，随后将菌液分装到500ml 预冷的离心杯中，4℃，2500rpm离心10分钟。

　　5.弃上清，离心杯中加入少量ddH2O，使沉淀悬浮后，再将水注满离心杯，4℃，4000rpm离心10分钟。

　　6.弃上清，加少量灭菌水，重悬菌体，再将水注满离心杯，4000rpm，4℃，离心10min.

　　7.弃上清，往离心杯中加入少量10%甘油（灭菌，预冷），重悬菌体，再加满10%甘油，  4℃， 4000rpm， 离心10min.

　　8.  弃上清，每个离心杯中加入5ml10％的甘油，使沉淀悬浮后，将菌液以300ul/管分装于1.5ml的离心管中，-80 ℃冰箱中保存。同时取100 μl感受态加0.01ng puc18直接电穿孔转化，检测转化效率。

　　9.次日观察转化子生长情况，并记录。

　　2.连接产物纯化

　　1.将连接产物转移至一1.5ml Eppendorf管中，加入下列试剂：

　　10ul  of  ddH2O

　　2ul   of  3M NaAC（PH5.2）

　　50ul  of  无水乙醇

　　轻轻混匀，稍微离心并将其置于-20℃放置1小时以上；

　　2.4℃，top Speed 离心30分钟；

　　3.小心移去上清，避免接触到管底的沉淀物；

　　4.加入500ul70％的乙醇，轻轻颠倒几次洗涤沉淀（注：不要离心混匀）；

　　5.4℃，top Speed离心5分钟；

　　6.小心移去上清，将此Eppendorf管置空气中直至无乙醇气味；

　　7.加入10ulddH2O重新溶解沉淀，4℃短期保存，-20℃长期保存备用；

　　3.电转化

　　1.从-80℃冰箱中取出感受态细胞，置于冰上解冻；

　　2.取1 μl 纯化后的质粒于一1.5ml的离心管中，将其和0.1CM的电极杯一起置于冰上预冷。

　　3.将40～100ul解冻的感受态细胞转移至此1.5ml 的离心管中，小心混匀，冰上放置10min.

　　4.打开电转仪，调至Manual，调节电压为2.1KV.

　　5.将此混合物转移至已预冷的电极杯中，轻轻敲击电极杯使混合物均匀进入电极杯的底部；

　　6. 将电极杯推入电转化仪，按一下pulse键，听到蜂鸣声后，向电击杯中迅速加入1000μl的SOC液体培养基，重悬细胞后，转移到1.5ml的离心管中。

　　7.37℃，220－250rpm复苏1小时。

　　8. 取20ul转化产物加160ulSOC涂板，放于37℃温室，过夜培养，次日查看转化结果。其余菌液加1：1的30％的甘油后混匀－80℃保存。

　　注：每块加有Amp的平板上均匀涂有X-Gal 80μl ，SOC 80μl，IPTG 20 μl.

　　4.电击杯清洗流程

　　1.用清水将电击杯稍冲一下。

　　2.向电击杯中加入的75%酒精浸泡2hr.

　　3.弃去酒精，再用蒸馏水冲洗2~3遍，然后用1ml的枪吸取超纯水反复吹打电击杯10遍以上。

　　4.加入无水乙醇2ml于电击杯中，浸泡30分钟。

　　5.弃去无水乙醇，于通风厨内挥干乙醇。

　　6.将清洗好的电击杯放入-20 ℃冰箱内待用。

　　注：1.不同样品使用的电机杯应分开；

　　2.每周用1％酒精浸泡30分钟。